Revista Mexicana de Ciencias Forestales Vol. 17 (96)

Proyecto Estratégico Forestal (2026)

Logotipo, nombre de la empresa

Descripción generada automáticamente

DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v17i96.1673

Artículo de investigación

 

Macromicetos de la región Chignahuapan-Zacatlán, Puebla, México

Macromycetes of the Chignahuapan-Zacatlán region, state of Puebla, Mexico

 

Marisela Cristina Zamora-Martínez1*, Rocío Sánchez Colín2, Ismael Fernando Chávez-Díaz3

 

Fecha de recepción/Reception date: 23 de marzo de 2026.

Fecha de aceptación/Acceptance date: 15 de junio de 2026.

_______________________________

1Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Conservación y Mejoramiento de Ecosistemas Forestales, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. México.

2Prestadora independiente de servicios profesionales. México.

3Centro Nacional de Recursos Genéticos, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. México.

 

*Autor para correspondencia; correo-e: zamora.marisela@inifap.gob.mx

*Correponding author; e-mail: zamora.marisela@inifap.gob.mx

 

 

 

En México, se han registrado aproximadamente 6 500 taxones de macromicetos y específicamente para el estado de Puebla el número varía entre 97 y 131. En el presente estudio se documentan las especies identificadas en dos localidades de la región Chignahuapan-Zacatlán, cuyos bosques están sujetos a manejo forestal. Los muestreos de campo se hicieron en 53 parcelas de 1 000 m2, 30 ubicadas en el ejido Rancho Nuevo Nanacamila, municipio Zacatlán de las Manzanas y 23 en el ejido Emiliano Zapata, municipio Chignahuapan, Puebla; los recorridos de campo fueron semanales durante los meses de julio-noviembre. Se reconocieron 114 especies, siete se agruparon en la división Ascomycota y 107 en Basidiomycota; con un total de 36 familias y 56 géneros. El orden Agaricales fue el mejor representado. En relación a las familias, destacaron Russulaceae con 20 especies, seguida por Amanitaceae con 13, cuyos géneros con mayor número de taxa fueron Amanita (13), Russula (12) y Lactarius (ocho). En cuanto a la comestibilidad, 59 especies son comestibles y 15 se citan de consumo con precaución. Se identificaron 34 especies sin registro previo en la literatura para la Sierra Norte de Puebla, lo cual es relevante dada la reducida superficie muestreada (5.3 ha) y evidencia la escasa exploración micológica existente en la región.

Palabras clave: Agaricales, Amanita, Basidiomycota, bosque templado, Lactarius, Russula.

Abstract

In Mexico, around 6 500 taxa of macromycetes have been recorded; specifically in the state of Puebla, the number ranges between 97 and 131. This study documents the species identified in two sites in the Chignahuapan-Zacatlán region, whose forests are subject to forest management. Field sampling was conducted on 53 plots of 1 000 m2 each, 30 in the Rancho Nuevo Nanacamila ejido, in Zacatlán de las Manzanas municipality, and 23 in the Emiliano Zapata ejido, in Chignahuapan municipality, Puebla; weekly field trips were conducted from July through November. A total of 114 species were identified, seven of which were classified in the division Ascomycota and 107 in Basidiomycota; there were 36 families and 56 genera. The order Agaricales was the best represented. Among the families, Russulaceae stood out with 20 species, followed by Amanitaceae with 13; the genera with the highest number of taxa were Amanita (13), Russula (12), and Lactarius (8). In terms of edibility, 59 species are listed as edible, and 15, as safe to eat with caution. A total of 34 species were identified that had not previously been recorded in the literature for the Sierra Norte de Puebla; this is significant, given the small area sampled (5.3 ha), which highlights the limited mycological exploration that has taken place in the region.

Keywords: Agaricales, Amanita, Basidiomycota, temperate forest, Lactarius, Russula.
 


 

Introducción

 

 

Los hongos son uno de los grupos de organismos más diversos, con aproximadamente 2.2-3.8 millones de especies, en términos muy conservadores, 1.5 millones (Hawksworth & Lücking, 2017). Se estima que en México existen alrededor de 200 000 (Guzmán, 1998); sin embargo, el conocimiento que se tiene de la diversidad fúngica es bajo, ya que solo se han registrado cerca de 6 500 taxones (3.5 %), la mayoría macromicetos (Guzmán, 1998).

Los estados de la república mexicana con mayor número de registros micológicos son Veracruz, Jalisco, Estado de México, Sonora, Michoacán, Querétaro, Durango, Chihuahua, Tamaulipas, Morelos, Quintana Roo, Aguascalientes, Puebla, Campeche y Yucatán (Aguirre-Acosta et al., 2014). Para el caso de Puebla, los trabajos referentes a la diversidad micológica son pocos, entre ellos están los de Medel-Ortiz et al. (2011) quienes citan 97 especies, mientras Aguirre-Acosta et al. (2014) registran 181 taxa, aunque ninguno menciona localidades en particular; y Pérez-López et al. (2015) documentan 25 taxones para el Cerro El Pinal, municipio Acajete, de los cuales 19 son Basidiomycetes y seis Ascomycetes.

Respecto a trabajos realizados en la Sierra Norte, Martínez-Alfaro et al. (1983) elaboraron un listado etnomicológico de 84 especies existentes en los municipios Cuetzalan y Zacapoaxtla; además de los publicados por Vázquez-Mendoza y Valenzuela-Garza (2010), quienes describieron 130 especies de macromicetos lignícolas; Vázquez-Mendoza (2012) hizo una revisión de ejemplares de herbario, en la que obtuvo 131 taxa, de los cuales 21 fueron medicinales; por su parte Vázquez et al. (2016) identificaron 95 especies de hongos lignícolas. En un estudio llevado a cabo en el mercado principal de Zaragoza, Puebla, Contreras-Cortés et al. (2018) identificaron 21 taxones de macromicetos comestibles.

En este contexto, el presente estudio tuvo por objetivo contribuir al conocimiento de la funga poblana, específicamente de la existente en la Sierra Norte, mediante el muestreo de esporomas durante tres periodos de lluvias en los ejidos: Rancho Nuevo Nanacamila, municipio Zacatlán de Las Manzanas (2015-2017) y Emiliano Zapata, municipio Chignahuapan (2023-2025).

 

 

 

 

Materiales y Métodos

 

 

Área de estudio

 

 

Se realizó la recolecta de esporomas en 53 sitios de 1 000 m2, ubicados en dos localidades de la Sierra Norte de Puebla (Cuadro 1; Figura 1): ejido Rancho Nuevo Nanacamila (RN), municipio Zacatlán de las Manzanas (30) y ejido Emiliano Zapata (EZ), municipio Chignahuapan (23). La superficie total de muestreo fue de 5.3 ha, y se aplicó un diseño de muestreo cuasi-sistemático, los sitioss se distribuyeron en cada uno de los tratamientos silvícolas aplicados en los ejidos (Cuadro 1).

 

Cuadro 1. Características geográficas, topográficas y tratamientos silvícolas de las localidades de muestreo en la región Chignahuapan-Zacatlan, Puebla, México.

Localidad

Coordenadas

(Grados)

IAlt.

(m)

Núm. sitios

Periodo de muestreo

Ejido Rancho Nuevo Nanacamila, municipio Zacatlán de las Manzanas

20°02'54.24'' y 20°04'30.00'' N; 98°04'42.24'' y 98°06'38.88'' O

2 391-2 493

30 (CR=6; AC1=7; AC2=6; CL=11)

2015-2017

Ejido Emiliano Zapata, municipio Chignahuapan

19°39'42" y 19°58'48" N; 97°57'18" y 98º18'06" O

2 757-2 855

18 (CR=3; CL, AC2 y AC3= 5 en cada uno)

2023-2025

2 877-2 919

5 (CS=5)

IAlt. = Intervalo altitudinal; CR = Corta de regeneración; CL = Corta de liberación; AC1 = Aclareo1; AC2 = Aclareo2; AC3 = Aclareo 3; CS = Corta de selección.

 

A = Ejido Emiliano Zapata, Chignahuapan, Puebla; B = Ejido Rancho Nuevo Nanacamila, Zacatlán de Las Manzanas, Puebla. Sitios de muestreo = Puntos rojos.

Figura 1. Ubicación de los sitios de muestreo en dos localidades de la región Chignahuapan-Zacatlán, Puebla, México.

 

Ejido Rancho Nuevo Nanacamila. El clima corresponde a C(W"2) (W) b(i), es decir templado subhúmedo con lluvias en verano, temperatura media del mes más frío entre -3 °C y 18 °C, la del mes más caliente hasta 22 °C; precipitación anual entre 700 y 1 500 mm (Guizar-Nolasco et al., 2016). Predomina el bosque de Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. y en menor proporción se presentan: P. teocote Schiede ex Schltdl. & Cham., P. leiophylla Schiede ex Schltdl. & Cham., P. rudis Endl. (sinonimia de Pinus hartwegii Lindl.), P. pseudostrobus Lindl., Abies religiosa (Kunth) Schltdl. & Cham.,Quercus spp. y Arbutus xalapensis Kunth (Zamora-Morales et al., 2018). Sus características fisonómicas son contrastantes debido a los distintos tratamientos silvícolas aplicados como parte de la gestión forestal mediante el Método de Desarrollo Silvícola (MDS), el cual se aplica en una superficie de 283.13 ha, en la que se siguen las prácticas silvícolas: corta de regeneración, corta de liberación (árboles Padre), cortas de aclareo. Los sitios de monitoreo permanente se distribuyeron en rodales sujetos a las cortas mencionadas y tuvieron una superficie de 33×33 m, a 100 m de distancia entre sitios, dentro de cada rodal.

Ejido Emiliano Zapata. Se presenta un clima templado subhúmedo con lluvias en verano (Cw) (García, 2004), temperatura promedio anual de 13.4 °C. La vegetación corresponde a un bosque de pino, con dominancia de Pinus patula y en menor proporción Pinus ayacahuite Ehrenb. ex Schltdl.; en las partes altas (2 919 msnm) predomina Abies religiosa, en donde se aplican cortas de selección bajo el Método Mexicano de Ordenación de Bosques Irregulares. La superficie total del ejido bajo manejo forestal es de 249.65 ha, en donde se establecieron 23 sitios de monitoreo circulares de 1 000 m2, a una distancia entre ellos de 100 m dentro de cada rodal.

 

 

Recolecta e identificación de esporomas

 

 

Los muestreos se efectuaron semanalmente en los meses de julio a noviembre (época de lluvias); durante los años de 2015-2017 (RN) y 2023-2025 (EZ). El material fúngico se separó por especie y se guardó en bolsas de polipapel o en papel encerado; posteriormente, se herborizaron e identificaron a partir de sus características macroscópicas; para ello se utilizaron claves y textos con descripciones e imágenes disponible en la literatura especializada (Delgado-Fuentes et al., 2005; García-Rodríguez et al., 2012; Kong-Luz, 2003; Largent et al., 1986; Pérez-Moreno et al., 2009; Pérez-Silva & Herrera-Suárez, 1991; Phillips, 1991; Rodríguez-Alcalá et al., 2002). El arreglo taxonómico de los taxa se presenta con base en Cifuentes (2008) e Index Fungorum (2026). Todos los ejemplares se depositaron en el Herbario Nacional Forestal “Biól. Luciano Vela Gálvez”: (INIF) del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP). La información referente a los usos de los hongos se obtuvo a partir de lo citado en la bibliografía (Contreras-Cortés et al., 2018; Dai et al., 2009; Hall et al., 2003; Montoya et al., 2007; Robles et al., 2007; Vázquez-Mendoza, 2012).

 

 

 

Resultados y Discusión

 

 

Se identificaron 114 especies, siete se agrupan en la división Ascomycota y 107 en Basidiomycota; con cinco clases, 11 órdenes, 36 familias y 56 géneros. La familia mejor representada fue Russulaceae con 20 especies, seguida por Amanitaceae con 13 (Cuadro 2).

 

Cuadro 2. Arreglo taxonómico de las especies identificadas en la Región Chignahuapan-Zacatlán, Puebla.

Especie

Hábito

Usos

Nuevo registro en Sierra Norte de Puebla

ASCOMYCOTA

 

 

 

   Leotiomycetes

 

 

 

     Helotiales

 

 

 

      Leotiaceae

 

 

 

       Leotia lubrica (Scop.) Pers. (BP, RN)

ECM

C

 

   Pezizomycetes

 

 

 

     Pezizales

 

 

 

      Discinaceae

 

 

 

         Gyromitra infula (Schaeff.) Quél. (BP, EZ)

S

CP

 

     Helvellaceae

 

 

 

      Helvella crispa Bull. (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      H. lacunosa Afzel. (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      H. vespertina N. H. Nguyen & Vellinga (BP, EZ)

ECM

CP

XX

     Pyronemataceae

 

 

 

      Otidea onotica (Pers.) Fuckel (BP, BA, RN, EZ)

S

C

XX

   Sordariomycetes

 

 

 

    Hypocreales

 

 

 

     Hypocreaceae

 

 

 

      Hypomyces lactifluorum (Schwein.) Tul. & C. Tul. (BP, RN)

P

C

 

BASIDIOMYCOTA

 

 

 

   Agaricomycetes

 

 

 

    Agaricales

 

 

 

     Agaricaceae

 

 

 

      Agaricus silvaticus Schaeff. (BP, BA, RN, EZ)

S

C

 

      A. silvicola (Vittad.) Peck (BP, BA, RN, EZ)

S

C

 

      A. subrutilescens (Kauffman) Hotson & D. E. Stuntz (BP, EZ)

S

C

XX

       Lepiota clypeolaria (Bull.) P. Kumm. (BP, BA, EZ)

S

T

XX

      L. cristata (Bolton) P. Kumm. (BP, EZ)

S

T

XX

      L. magnispora Murrill (BP, EZ)

S

T

 

     Amanitaceae

 

 

 

      Amanita chlorinosma (Peck) Lloyd (BP, RN)

ECM

T

 

      A. gemmata (Fr.) Bertill. (BP, RN)

ECM

T

 

      A. grupo caesarea sensu Guzmán y Ramírez-Guillén (2001) (BP, RN)

ECM

C

 

      A. elongata Peck (BP, EZ)

ECM

T

XX

      A. flavoconia G. F. Atk. (BP, RN, EZ)

ECM

C

XX

      A. fulva Fr. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      A. muscaria (L.) Lam. (BP, RN, EZ)

ECM

T

 

      A. pachycolea D. E. Stuntz (BP, EZ)

ECM

C

 

      A. pantherina (DC.) Krombh. (BP, RN, EZ)

ECM

T

 

      A. rubescens Pers. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      A. vaginata (Bull.) Lam. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      A. verna Bull. ex Lam. (BP, EZ)

ECM

T

 

      A. xylinivolva Tulloss, Ovrebo & Halling (BP, EZ)

ECM

T

XX

     Clitocybaceae

 

 

 

      Clitocybe fragrans (With.) P. Kumm. (BP, EZ)

ECM

T

XX

     Crepidotaceae

 

 

 

      Crepidotus mollis (Schaeff.) Staude(BP, EZ)

S

NC

 

     Hydnangiaceae

 

 

 

      Laccaria amethystina Cooke (BP, BA, RN, EZ)

ECM

CP

XX

      L. bicolor (Maire) P. D. Orton (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      L. laccata (Scop.) Cooke (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      L. trichodermophora G.M. Muell. (BP, RN)

ECM

CP

XX

    Hygrocybaceae

 

 

 

      Hygrocybe conica (Schaeff.) P. Kumm. (BP, EZ)

S

T

 

     Hygrophoraceae

 

 

 

      Ampulloclitocybe clavipes (Pers.) Redhead, Lutzoni, Moncalvo & Vilgalys (BP, BA, RN, EZ)

S

CP

XX

      Hygrophorus chrysodon (Batsch) Fr. (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      H. russula (Schaeff. ex Fr.) Bataille (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

     Hymenogastraceae

 

 

 

      Gymnopilus penetrans (Fr.) Murrill (BP, BA, EZ)

S

T

 

     Incertae sedis

 

 

 

      Cystodermella cinnabarina (Alb. & Schwein.) Harmaja (BP, EZ)

S

NC

 

      C. granulosa (Batsch) Harmaja (BP, EZ)

S

NC

 

     Inocybaceae

 

 

 

      Pseudosperma sororium (Kauffman) Matheny & Esteve-Rav. (BP, BA, EZ)

ECM

T

 

     Lycoperdaceae

 

 

 

      Calvatia cyathiformis (Bosc) Morgan (BP, BA, EZ)

S

C

 

      Lycoperdon perlatum Pers. (BP, RN, EZ)

S

C

 

      Lycoperdon pyramidalis Timm (BP, RN, EZ)

S

C

XX

      Lycoperdon umbrinum Pers. (BP, BA, RN, EZ)

S

CP

XX

     Lyophyllaceae

 

 

 

      Lyophyllum decastes (Fr.) Singer (BP, RN)

S

C

 

      Mycenaceae

 

 

 

      Xeromphalina tenuipes (Schwein.) A. H. Sm. (BP, EZ)

S

NC

 

     Omphalotaceae

 

 

 

      Gymnopus dryophilus (Bull.) Murrill(BP, BA, RN, EZ)

S

C

 

      Rhodocollybia butyracea (Bull.) Lennox (BP, BA, EZ)

S

C

 

      R. lentinoides (Peck) Halling (BP, BA, EZ)

S

NC

 

     Pleurotaceae

 

 

 

      Pleurotus ostreatus (Jacq.) P. Kumm. (BP, EZ)

S

C

 

     Physalacriaceae

 

 

 

      Armillaria mellea (Vahl) P. Kumm. (BP, EZ)

S

C

 

      Oudemansiella canarii (Jungh.) Höhn. (BP, EZ)

S

C

 

     Strophariaceae

 

 

 

      Hebeloma fastibile (Pers.) P. Kumm. (BP, RN)

ECM

C

 

      Hypholoma fasciculare (Huds.) P. Kumm. (BP, BA, EZ)

S

T

 

      Leratiomyces squamosus (Pers.) Bridge & Spooner (BP, EZ)

S

T

 

     Tricholomataceae

 

 

 

      Infundibulicybe gibba (Pers.) Harmaja (BP, BA, RN, EZ)

S

C

 

      Leucopaxillus gentianeus (Quél.) Kotl. (BP, BA, EZ)

ECM

NC

 

      Tricholoma equestre (L.) P. Kumm. (BP, RN, EZ)

ECM

CP

XX

      T. saponaceum (Fr.) P. Kumm. (BP, EZ)

ECM

NC

XX

    Boletales

 

 

 

     Boletaceae

 

 

 

      Boletus aff. edulis Bull. (BP, RN)

ECM

C

 

      B. reticulatus Schaeff. (BP, RN)

ECM

CP

 

      B. rubriceps D. Arora & J. L. Frank (BP, EZ)

ECM

C

 

      B. subvelutipes Peck (BP, EZ)

ECM

C

 

      Butyriboletus regius (Krombh.) D. Arora & J. L. Frank (BP, RN)

ECM

CP

XX

      Leccinum aurantiacum (Bull.) Gray (BP, RN, EZ)

ECM

CP

XX

      Strobilomyces confusus Singer (BP, BA, EZ)

ECM

C

XX

      Suillellus luridus (Schaeff.) Murrill (BP, EZ)

ECM

CP

XX

      Xerocomellus chrysenteron (Bull.) Šutara (BP, BA, RN, EZ)

ECM

CP

XX

     Hygrophoropsidaceae

 

 

 

      Hygrophoropsis aurantiaca (Wulfen) Maire ex Martin-Sans(BP, EZ)

S

C

 

     Sclerodermataceae

 

 

 

      Scleroderma areolatum Ehrenb. (BP, EZ)

ECM

T

 

     Suillaceae

 

 

 

      Suillus brevipes (Peck) Kuntze (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      S. granulatus (L.) Roussel (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      S. luteus (L.) Roussel (BP, RN)

ECM

C

 

      S. salmonicolor (Frost) Halling (BP, BA, RN, EZ)

ECM

CP

XX

    Cantharellales

 

 

 

     Hydnaceae

 

 

 

      Cantharellus cinnabarinus (Schwein.) Schwein. (BP, BA, EZ)

ECM

C

 

      Cantharellus cibarius Fr. (BP, RN)

ECM

C

 

      Craterellus cornucopioides (L.) Pers. (BP, RN)

ECM

C

XX

      Hydnum repandum L. (BP, RN)

ECM

C

 

     Clavulinaceae

 

 

 

      Clavulina cinerea (Bull.) J. Schröt. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      Clavulina coralloides (L.) J. Schröt. (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      Clavulina rugosa (Bull.) J. Schröt. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

    Geastrales

 

 

 

     Geastraceae

 

 

 

      Geastrum saccatum Fr. (BP, BA, EZ)

S

NC

 

      G. triplex Jungh. [as 'Geaster'] (BP, EZ)

S

NC

 

    Gomphales

 

 

 

     Clavariadelphaceae

 

 

 

      Clavariadelphus truncatus Donk (BP, RN)

ECM

C

 

     Gomphaceae

 

 

 

      Phaeoclavulina myceliosa (Peck) Franchi & M. Marchetti (BP, EZ)

ECM

NC

XX

      Ramaria aurea (Schaeff.) Quél. (BP, EZ)

ECM

CP

 

      R. aff flava (Schaeff.) Quél. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      R. stricta (Pers.) Quél. (BP, RN, EZ)

S

C

 

      Turbinellus floccosus (Schwein.) Earle ex Giachin & Castellano (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      Turbinellus kauffmanii (A. H. Sm.) Giachini (BP, EZ)

ECM

CP

 

    Polyporales

 

 

 

     Panaceae

 

 

 

      Panus conchatus (Bull.) Fr. (BP, EZ)

S

T

 

     Polyporaceae

 

 

 

      Neofavolus americanus J. H. Xing, J. L. Zhou & B. K. Cui (BP, EZ)

S

CP

 

     Sparassidaceae

 

 

 

      Sparassis crispa (Wulfen) Fr. (BP, EZ)

S

C

 

    Russulales

 

 

 

     Russulaceae

 

 

 

      Lactarius chrysorrheus Fr. (BP, RN, EZ)

ECM

C

XX

      L. deliciosus (L.) Gray (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      L. indigo (Schwein.) Fr. (BP, RN, EZ)

ECM

C

 

      L. deceptivus Peck (BP, RN)

ECM

T

XX

      L. pubescens Fr. (BP, RN)

ECM

T

XX

      L. aff. salmonicolor R. Heim & Leclair (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      L. subdulcis (Pers.) Gray (BP, RN)

ECM

C

XX

      L. vinaceorufescens A. H. Sm. (BP, EZ)

ECM

T

 

      Russula americana (Singer) Singer (BP, BA, EZ)

ECM

T

 

      R. brevipes Peck (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

 

      R. cerolens Shaffer (BP, EZ)

ECM

T

XX

      R. claroflava Grove (BP, RN)

ECM

C

XX

      R. delica Fr. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

XX

      R. emetica (Schaeff.) Pers. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

CP

 

      R. mexicana Burl. (BP, RN, EZ)

ECM

CP

XX

      R. olivacea (Schaeff.) Fr. (BP, BA, RN, EZ)

ECM

C

XX

      R. queletii Fr. (BP, RN)

ECM

CP

XX

      R. rhodocephala Bazzical., D. Mill. & Buyck (BP, EZ)

ECM

T

 

      R. sanguinaria (Schumach.) Rauschert (BP, EZ)

ECM

T

 

      R. xerampelina (Schaeff.) Fr. (BP, EZ)

ECM

C

 

     Telephorales

 

 

 

     Bankeraceae

 

 

 

      Sarcodon imbricatus (L.) P. Karst. (BP, RN)

ECM

C

XX

ECM = Hongo ectomicorrícico; P = Parásito; S = Saprobio; C = Comestible; CP = Comestible con precaución; NC = No comestible; T= Tóxico; BA = Bosque de Abies; BP = Bosque de Pinus; EZ = Ejido Emiliano Zapata; RN = Ejido Rancho Nuevo Nanacamila. Basado en Cifuentes (2008) e Index Fungorum (2026).

 

 

La composición taxonómica observada evidenció una marcada dominancia de Russulaceae, familia que concentró 20 taxa, seguida por Amanitaceae con 13 especies identificadas. Como parte de la primera, el género Russula presentó la mayor riqueza específica, con 12 especies. Esto coincide con lo referido por García-Valencia et al. (2025), quienes mediante el uso de códigos de barras genéticos (ITS) para explorar la diversidad de las comunidades de hongos rizosféricos y ectomicorrícicos (ECM) asociadas a las raíces en rodales de Pinus del ejido Rancho Nuevo, registran a Russula como uno de los principales taxa identificados. Estos hallazgos sugieren que ambos géneros constituyen componentes relevantes de la micobiota local, en concordancia con estudios previos realizados en la Sierra Norte de Puebla que destacan, particularmente, la presencia de Amanitaceae (Pérez-López et al., 2015).

Respecto a la estructura funcional, los macromicetos ectomicorrícicos representaron 67.5 % de los taxa identificados; proporción que corresponde a 33.6 % del total citado para México (Garibay-Orijel et al., 2020). Su elevada frecuencia probablemente se relaciona con la abundancia de hospederos potenciales, especies de Pinus y Quercus, con las que establecen relaciones mutualistas esenciales para el intercambio de nutrientes y carbono (Garibay-Orijel et al., 2020; Smith & Read, 2008). Los hongos con hábito saprobio constituyeron 31.5 % del total registrado, entre las que destacan diversos taxa de amplia distribución en ecosistemas forestales templados (Cuadro 2). El registro de ambos grupos funcionales responde al tipo de estudio que se documenta, el cual se hizo a partir de la recolección de esporomas, estructuras características tanto de los macromicetos ectomicorrícicos como de los saprobios.

Asimismo, se identificó Hypomyces lactifluorum (Schwein.) Tul. & C. Tul., taxón de hábito parásito con alto valor gastronómico (González-Rivadeneira & Argueta-Villamar, 2018; Robles-García et al., 2018), cuyos hospederos son hongos comestibles de los géneros Lactarius y Russula, en especial R. brevipes s. l. Peck.

La riqueza de macromicetos comestibles presentes en las localidades bajo estudio (58 especies) refleja su importancia etnomicológica. Garibay-Orijel y Ruan-Soto (2014) registraron para México 371 especies de hongos comestibles; por lo tanto, los taxa identificados corresponden a 30.7 % del total citado para el país. Los géneros Amanita, Russula, Lactarius y Suillus concentraron el mayor número de taxones (Cuadro 2). Cabe señalar que tanto Amanita como Russula se han citado con un gran número de especies comestibles, el primero con 50 y el segundo con 143 (Li et al., 2021; Zhang et al., 2015). Aunado a lo anterior, se identificaron 15 especies cuyo consumo debe realizarse con precaución debido a las referencias contradictorias en cuanto a su consumo (Cuadro 2).

De las especies con importancia etnomicológica, destacan por su relevancia comercial tanto a nivel nacional como internacional: Amanita gpo. caesarea Guzmán y Ramírez-Guillén (2001), Boletus aff. edulis Bull., Lactarius deliciosus (L.) Gray, Cantharellus cibarius Fr., Turbinellus floccosus (Schwein.) Earle ex Giachini & Castellano y Ramaria aff. flava (Schaeff.) Quél. (Estrada-Martínez et al., 2009; Jiménez-Ruíz et al., 2013; Pérez-López et al., 2015). Lo anterior resalta su potencial como recurso complementario al aprovechamiento forestal maderable (Garibay-Orijelet al., 2009; Pérez-Moreno et al., 2009).

Por otra parte, se recolectaron siete taxones citados como medicinales: Lycoperdon perlatum Pers. y Leotia lubrica (Scop.) Pers.(cicatrizante), Agaricus silvaticus Schaeff. (antioxidante), Infundibulicybe gibba (Pers.) Harmaja (estimulante), Laccaria laccata (Scop.) Cooke y L. amethystina Cooke e Hydnum repandum L. (antitumorales) (Dai et al., 2009; Robles et al., 2007). Particularmente, Vázquez-Mendoza (2012) identificó 21 taxones medicinales provenientes de la Sierra Norte de Puebla. A nivel mundial se reconocen más de 500 especies de hongos silvestres con propiedades medicinales y aproximadamente 100 son de hábito ectomicorrícico (Pérez-Moreno et al., 2009, 2020).

Finalmente, se registraron siete taxones identificados como tóxicos: Amanita chlorinosma (Peck) Lloyd, A. flavoconia G. F. Atk., A. pantherina (DC.) Krombh., A. muscaria (L.) Lam., Lactarius pubescens Fr., L. deceptivus Pecky Russula emetica (Schaeff.) Pers. (Hall et al., 2003; Montoya et al., 2007). Este hallazgo adquiere particular relevancia ante el creciente interés por el aprovechamiento y consumo de hongos silvestres, y resalta la importancia de generar inventarios micológicos detallados en regiones donde la recolección de hongos silvestres constituye una práctica cada vez más frecuente. Esto para prevenir intoxicaciones que ocurren por confundir una especie tóxica con una comestible, debido principalmente a la ignorancia y la audacia de recolectores inexpertos, así como a la pérdida de los conocimientos micológicos tradicionales (Ruan-Soto, 2018; Yaneva et al., 2026).

En términos de riqueza, 80 especies están documentadas para el estado de Puebla (Guzmán, 2008; Marín-Castro et al., 2015; Pérez-López et al., 2015; Romero-Arenas et al., 2009; Vázquez et al., 2016; Vázquez-Mendoza & Valenzuela-Garza, 2010). Por lo tanto, los taxa recolectados en las dos localidades muestreadas representan 87 % de los macromicetos citados para la región, lo que revela una alta riqueza, dada la reducida superficie (5.3 ha) en la que se realizó el muestreo. En el Cuadro 2 se registran las especies identificadas en cada una de las localidades o en ambas.

Una aportación relevante del presente estudio son las 34 especies que representan nuevos registros para la Sierra Norte de Puebla (Cuadro 2). De estas, 10 solo se recolectaron en el ejido Emiliano Zapata y nueve en Rancho Nuevo Nanacamila. En las dos localidades la mayoría de los especímenes se obtuvieron en bosque de pino, excepto Strobilomyces confusus Singer y Lepiota clypeolaria (Bull.) P. Kumm. que también se recolectaron en bosque de oyamel; sin embargo, es importante señalar que el muestreo se limitó a cinco sitios en este tipo de bosque, lo cual es probable que condicionara los resultados. Algo similar ocurrió con el total de macromicetos identificados, ya que 76 % se recolectaron en el bosque de Pinus.

Respecto al número de especies, los resultados indican una proporción similar entre las dos localidades estudiadas, con una ligera superioridad en el ejido Emiliano Zapata (57 %) en comparación con Rancho Nuevo Nanacamila (43 %) (Cuadro 2). No obstante, se requiere de un análisis ecológico que permita, mediante el cálculo de las diversidades alfa y beta complementar la información que se presenta en este estudio.

 

 

Conclusiones

 

 

Se presenta la funga identificada en dos localidades de la región Chignahuapan-Zacatlán, Puebla, cuyo registro es de 114 especies de macromicetos, 34 de ellos representan registros nuevos para la Sierra Norte de Puebla, lo cual es relevante dada la superficie reducida bajo estudio y resalta la importancia de la región como reservorio de diversidad fúngica asociada a ecosistemas forestales templados; además se evidencia la necesidad de llevar a cabo mayor número de exploraciones micológicas tanto en esa región, como en el resto de la entidad, sobre todo ante la vulnerabilidad climática y la deforestación a la que están sujetos los bosques y servicios ecosistémicos que proveen.

En la zona se registran 59 especies comestibles, lo cual revela el potencial de este recurso forestal no maderable como una fuente de proteína para la dieta de los ejidatarios, así como de ingresos adicionales por su comercialización, cuya incorporación a la gestión forestal contribuiría al manejo sustentable tanto del aprovechamiento maderable, como de las poblaciones de macromicetos.

 

Agradecimientos

 

Se agradece a los ejidatarios de Rancho Nuevo Nanacamila y Emiliano Zapata, por las facilidades para el desarrollo de las actividades de campo. Al Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP) por el financiamiento otorgado a través de los proyectos: “Manejo integrado de recursos forestales para la sustentabilidad de los servicios ecosistémicos ante el cambio climático” y “Los tratamientos silvícolas y su impacto en las poblaciones de los hongos ectomicorrizógenos comestibles”. Al M. en C. Francisco Moreno Sánchez por la elaboración de la Figura 1.

 

Conflicto de intereses

 

Marisela Cristina Zamora-Martínez declara no haber participado en ninguna etapa del proceso editorial del documento.

 

Contribución por autor

 

Marisela Cristina Zamora-Martínez: diseño de la investigación, recolecta, supervisión del trabajo de campo, identificación del material fúngico, redacción del manuscrito; Rocío Sánchez Colín: trabajo de campo, identificación del material fúngico, sistematización de la información de campo; Fernando Ismael Chávez-Díaz: trabajo de campo, revisión del manuscrito.

 

 

Referencias

Aguirre-Acosta, E., Ulloa, M., Aguilar, S., Cifuentes, J., & Valenzuela, R. (2014). Biodiversidad de hongos en México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 85(Suppl. 1), 76-81. https://doi.org/10.7550/rmb.33649

Cifuentes, J. (2008). Hongos. Catálogo taxonómico de especies de México. En J. S. Ocegueda & J. Llorente-Bousquets (Coords.), Capital natural de México, Volumen I Conocimiento actual de la biodiversidad [CD 1]. Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad. https://es.scribd.com/document/622305403/Cifuentes-2008-Hongos-Cata-logo-taxono-mico-Me-xico

Contreras-Cortés, L. E. U., Vázquez-García, A., & Ruan-Soto, F. (2018). Etnomicología y venta de hongos en un mercado del Noroeste del estado de Puebla, México. Scientia Fungorum, 47, 47-55. https://doi.org/10.33885/sf.2018.47.1192

Dai, Y.-C., Yang, Z.-L., Cui, B.-K., Yu, C.-J., Zhou, L.-W. (2009). Species diversity and utilization of medicinal mushrooms and fungi in China (Review). International Journal of Medicinal Mushrooms, 11(3), 287-302. https://www.dl.begellhouse.com/journals/708ae68d64b17c52,4f53a14232dd0d51,28301e4640ed5a8f.html#

Delgado-Fuentes, A., Villegas-Ríos, M., & Cifuentes-Blanco, J. (2005). Glosario ilustrado de los caracteres macroscópicos en Basidiomycetes con himenio laminar. Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional Autónoma de México. https://books.google.com.mx/books?id=BUzHH9Xbg4kC&printsec=frontcover&hl=es&source=gbs_ge_summary_r&cad=0#v=onepage&q&f=false

Estrada-Martínez, E., Guzmán, G., Cibrián-Tovar, D., & Ortega-Paczka, R. (2009). Contribución al conocimiento etnomicológico de los hongos comestibles silvestres de mercados regionales y comunidades de la Sierra Nevada (México). Interciencia, 34(1), 25-33. https://www.redalyc.org/pdf/339/33934104.pdf

García, E. (2004). Modificaciones al sistema de clasificación climática de Köpen (Serie Libros Núm. 6). Instituto de Geografía de la Universidad Nacional Autónoma de México. https://publicaciones.geografia.unam.mx/index.php/ig/catalog/book/83

García-Rodríguez, J. L., Sarmiento-López, H., Amador-Sierra, D., & Mejía-Bojórquez, J. M. (2012). Hongos silvestres ectomicorrícicos de bosques templados fríos de los municipios de Pueblo Nuevo, San Dimas y Durango, Durango [Libro Técnico Núm. 8]. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias.

García-Valencia, L. E., González-Escobedo, R., Zamora-Martínez, M. C., Pérez-García, J., Garibay-Orijel, R., García-Campusano, F. (2025). Silvicultural practices shape fungal diversity and community composition: Metabarcoding study in a Pinus forest Central Mexico. Forest, 16(9), Article 1397. https://doi.org/10.3390/f16091397

Garibay-Orijel, R., & Ruan-Soto, F. (2014). Listado de los hongos silvestres consumidos como alimento tradicional en México. En Á. Moreno-Fuentes & R. Garibay-Orijel (Eds.), La Etnomicología en México, Estado del arte (pp. 91-109). Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (Conacyt), Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, Instituto de Biologia de la Universidad Nacional Autónoma de México, Sociedad Mexicana de Micología, Asociación Etnobiológica Mexicana A. C., Grupo lnterdisciplinario para el Desarrollo de la Etnomicología en Mexico, Sociedad Latinoamericana de Etnobiología. https://www.researchgate.net/publication/404583550_Libro_Etnomicologia_en_Mexico_estado_del_arte

Garibay-Orijel, R., Argüelles-Moyao, A., Álvarez-Manjarrez, J., Ángeles-Argáiz, R. E., García-Guzmán, O. M., & Hernández-Yáñez, H. (2020). Diversity and importance of edible mushrooms in ectomycorrizal communities in Mexican Neotropics. In J. Pérez-Moreno, A. Guerin-Laguette, R. Flores-Arzú, & F.-Q. Yu (Eds.), Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World. Perspectives from Ecological, Agricultural and Social Sciences (pp. 407-424). Springer Nature. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_15

Garibay-Orijel, R., Córdova, J., Cifuentes, J., Valenzuela, R., Estrada-Torres, A., & Kong, A. (2009). Integrating wild mushrooms use into a model of sustainable management for indigenous community forests. Forest Ecology and Management, 258(2), 122-131. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0378112709002497

González-Rivadeneira, T., & Argueta-Villamar, A. (2018). Del bosque a la mesa: Conocimientos tradicionales sobre los hongos alimenticios de la comunidad P’urhepecha de Cherán K’eri. Revue d’ethnoécologie, (13), 1-19. https://doi.org/10.4000/ethnoecologie.3488

Guizar-Nolasco, E, Ávalos-Rosales, D. M., Espinoza-Guerrero, E., & Olguín-del Rosario, K. (2016). Estudio florístico de la cuenca de abasto de la Región Chignahuapan-Zacatlán, Puebla, México. Comisión Nacional Forestal-Gerencia Estatal Puebla, Turismo de Naturaleza de la Sierra Norte de Puebla, A. C., Asesores en Manejo de Recursos Forestales S. C. https://es.scribd.com/document/855103302/Estudio-Floristico-UMAFOR-2108Chignahuapan-Zacatlan

Guzmán, G. (1998). Análisis cualitativo y cuantitativo sobre la diversidad de los hongos en México (Ensayo sobre el inventario fúngico del país). En G. Halffter (Comp.), La diversidad biológica de Iberoamérica, Vol. II (pp. 111-175). Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo, Instituto de Ecología, A. C., y Secretaria de Desarrollo Social. https://books.google.com.mx/books/about/La_Diversidad_biologica_de_Iberoamerica.html?id=PhlFAQAAIAAJ&redir_esc=y

Guzmán, G. (2008). Análisis de los estudios sobre los macromycetes de México. Revista Mexicana de Micología, (28), 7-15. https://www.scientiafungorum.org.mx/index.php/micologia/article/view/1026

Hall, I. R., Stephenson, S. L., Buchanan, P. K., Yun, W., & Cole, A. L. J. (2003). Edible and poisonous mushrooms of the world. New Zealand Institute for Crop and Food Research. https://theswissbay.ch/pdf/Books/Survival/Flora%20and%20Fauna/Fungi/Edible%20and%20Poisonous%20Mushrooms%20of%20the%20World%20%282003%29.pdf

Hawksworth, D. L., & Lücking, R. (2017). Fungal diversity revisited: 2.2 to 3.8 million species. Microbiology Spectrum, 5(4), Article FUNK-0052-2016. https://doi.org/10.1128/microbiolspec.funk-0052-2016

Index Fungorum. (2026, febrero). Index Fungorum [Database]. Board of Trustees of the Royal Botanic Gardens, Kew. www.indexfungorum.org

Jiménez-Ruíz, M., Pérez-Moreno, J., Almaraz-Suárez, J. J., & Torres-Aquino, M. (2013). Hongos silvestres con potencial nutricional, medicinal y biotecnológico comercializados en Valles Centrales, Oaxaca. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 4(2), 199-213. https://doi.org/10.29312/remexca.v4i2.1232

Kong-Luz, A. (2003). El género Russula (Fungi, Russulales) en el Parque Nacional La Malinche [Tesis de Maestría en Ciencias, Universidad Autónoma de México]. Repositorio DGB UNAM. https://ru.dgb.unam.mx/items/973ba302-62e8-441c-bcff-57138135e0f2

Largent, D. L. (1986). How to identify mushrooms to genus I: Macroscopic features (3rd edition). Mad River Press Inc. https://www.scirp.org/reference/referencespapers?referenceid=4144654

Li, H., Tian, Y., Menolli, Jr., N., Ye, L., Karunarathna, S. C., Pérez-Moreno, J., Rahman, M. M., Rashid, M. H., Phengsintham, P., Rizal, L., Kasuya, T., Lim, Y. W., Dutta, A. K., Khalid, A. N., Huyen, L. T., Balolong, M. P., Baruah, G., Madawala, S., Thongklang, N., … Mortimer, P. E. (2021). Reviewing the world´s edible mushrooms species: A new evidence-based classification system. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 20(2), 1982-2014. https://doi.org/10.1111/1541-4337.12708

Marín-Castro, M. A., Silva-Díaz, V., Linares-Fleites, G., Castagnino, A. M., & Ticante-Roldán, J. A. (2015). La biodiversidad de los hongos ectomicorrízicos y su importancia para la conservación del bosque de la zona poblana del Parque Nacional Malintzi. En G. Pulido-Flores, S. Monks & M. López-Herrera (Eds.), Estudios en Biodiversidad, Volumen 1 (pp. 180-195). Zea Books. https://digitalcommons.unl.edu/biodiversidad/17

Martínez-Alfaro, M. A., Pérez-Silva, E., & Aguirre-Acosta, E. (1983). Etnomicología y exploraciones micológicas en la Sierra Norte de Puebla. Boletín de la Sociedad Mexicana de Micología, (18), 51-63. https://www.scientiafungorum.org.mx/index.php/micologia/article/view/574

Medel-Ortiz, R., Espinoza-Texis, A., Sánchez-Alonso, P., Romero-Arenas, O., & López-Reyes, L. (2011). Diversidad de hongos. En Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad (Ed.), La Biodiversidad en Puebla: Estudio de Estado (pp. 98-110). Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad, Gobierno del Estado de Puebla, Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. https://smadsot.puebla.gob.mx/images/Biodiversidad_en_Puebla2.pdf

Montoya, A., Méndez-Espinoza, C., Flores-Rivera, R., Kong, A., & Estrada-Torres, A. (2007). Hongos tóxicos de Tlaxcala [Libro Técnico Núm. 2]. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias.

Pérez-López, R. I., Mata, G., Aragón-García, A., Jiménez-García, D., & Romero-Arenas, O. (2015). Diversidad de hongos silvestres comestibles del cerro El Pinal, municipio de Acajete, Puebla, México. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios, 2(6), 277-289. https://doi.org/10.19136/era.a2n6.677

Pérez-Moreno, J., Guerin-Laguette, A., Flores-Arzú, R., Yu, F.-Q., & Verbeken, A. (2020). Setting the scene. In J. Pérez-Moreno, A. Guerin-Laguette, R. Flores-Arzú & F.-Q. Yu (Eds.), Mushrooms, humans and nature in a changing world. Perspectives from ecological, agricultural and social sciences (pp. 3-28). Springer Nature. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_1

Pérez-Moreno, J., Lorenzana-Fernández, A., Carrasco-Hernández, V., & Yescas-Pérez, A. (2009). Los hongos comestibles silvestres del Parque Nacional Izta-Popo, Zoquiapan y Anexos. Colegio de Postgraduados, Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales, Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología. https://www.researchgate.net/profile/Jesus-Perez-27/publication/326832659_Hongos_comestibles_silvestres/links/5c397877a6fdccd6b5a5eb03/Hongos-comestibles-silvestres.pdf

Pérez-Silva, E., & Herrera-Suárez, T. (1991). Iconografía de macromicetos de México I Amanita. Universidad Nacional Autónoma de México. https://books.google.com.mx/books/about/Iconograf%C3%ADa_de_macromicetos_de_M%C3%A9xico.html?id=u9-YK0lu5ywC&redir_esc=y

Phillips, R. (1991). Mushrooms of North America. Little Brown and Company.

Robles, L., Huerta, G., Andrade, R. H., & Ángeles, H. M. (2007). Conocimiento tradicional sobre los macromicetos en dos comunidades Tseltales de Oxchuc, Chiapas, México. Etnobiología, 5(1), 21-35. https://revistaetnobiologia.mx/index.php/etno/article/view/233

Robles-García, D., Suzán-Aspiri, H., Montoya-Esquivel, A., García-Jiménez, J., Esquivel-Naranjo, E. U., Yahia, E., & Landeros-Jaime, F. (2018). Ethnomycological knowledge in three communities in Amealco, Querétaro, México. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 14, Article 7. https://doi.org/10.1186/s13002-017-0202-7

Rodríguez-Alcalá, O., Cedano, M., Villaseñor-Ibarra, L., & Arias, A. (2002). Guía ilustrada de los hongos del Bosque La Primavera. Universidad de Guadalajara. https://es.slideshare.net/slideshow/hongos-del-bosque-la-primavera-tomo-1/66900507

Romero-Arenas, O., Huerta-Lara, M., Becerril-Herrera, M., Bautista-Calles, J., Damián-Huato, M. Á., Tapia-Rojas, A. M, Valencia-de Ita, M. de los Á., & Bonilla-Vazquez, L. A. (2009). Diversity of wild mushrooms in the commonwealth of Benito Juárez, Tetela de Ocampo; Puebla-México. Research Journal of Biological Sciences, 4(2), 179-186. https://doi.org/rjbsci.2009.179.186

Ruan-Soto, F. (2018). Intoxicaciones por consumo de hongos silvestres entre los tsotsiles de Chamula, Chiapas, México. Sociedad y Ambiente, 6(17), 7-31. https://doi.org/10.31840/sya.v0i17.1838

Smith, S. E., & Read, D. (2008). Mycorrhizal symbiosis (3rd ed.). Academic Press. https://www.sciencedirect.com/book/monograph/9780123705266/mycorrhizal-symbiosis

Vázquez, S., Valenzuela, R., & Del Castillo, R. F. (2016). Macromicetos lignícolas de la Sierra Norte de Puebla, México, con notas sobre su distribución altitudinal. Acta Botánica Mexicana, (114), 1-14. https://doi.org/10.21829/abm114.2016.1100

Vázquez-Mendoza, S. (2012). Nota científica: Macromicetos medicinales provenientes de la Sierra Norte de Puebla, México; depositados en el herbario "Gastón Guzmán", ENCB-IPN. Etnobiología, 10(2), 34-37. https://revistaetnobiologia.mx/index.php/etno/article/view/208

Vázquez-Mendoza, S., & Valenzuela-Garza, R. (2010). Macromicetos de la Sierra Norte del estado de Puebla, México. Naturaleza y Desarrollo, 8(1), 43-58. https://ru.dgb.unam.mx/items/267215e2-5f63-43c4-8cdc-1770293d24db

Yaneva, G., Dimitrova, T., Cherneva, D., Iliev, I., Mihalev, K., & Georgieva, S. (2026). Recent advances in toxic wild mushroom distribution and social epidemiology. International Journal Environmental Research and Public Health, 23(4), Article 411. https://doi.org/10.3390/ijerph23040411

Zamora-Morales, B. P., Zamora-Martínez, M. C., Nieto de Pascual-Pola, M. C. del C., & García-Campusano, F. T. A. (2018). Condiciones edáficas, abundancia y riqueza de hongos ectomicorrizógenos comestibles. Revista Mexicana de Ciencias Forestales, 9(48), 226-252. https://doi.org/10.29298/rmcf.v8i48.152

Zhang, P., Tang, L.-P., Cai, Q., & Xu, J.-P. (2015). A review on the diversity, phylogeography and population genetics of Amanita mushrooms. Mycology, 6, 86-93. https://doi.org/10.1080/21501203.2015.1042536

 

 

        

Todos los textos publicados por la Revista Mexicana de Ciencias Forestales sin excepción– se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 Atribución-No Comercial (CC BY-NC 4.0 Internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.